La diarrhée est l’une des principales causes de mortalité chez les veaux au cours du premier mois de vie2,3,4,5. Elle survient principalement dans les 3 premières semaines, avec un pic de morbidité avant l’âge de deux semaines6,7,8,9. Les agents pathogènes les plus fréquemment retrouvés lors de diarrhée chez les veaux nouveau-nés sont Escherichia coli, le rotavirus bovin, le coronavirus bovin et Cryptosporidium spp.9,10. Escherichia coli entérotoxinogène (ETEC) affecte les veaux en première semaine de vie alors que le rotavirus, le coronavirus et Cryptosporidium spp. touchent les animaux âgés de deux à trois semaines8,10,11,12,13.
Les chercheurs ont suggéré qu’au-delà de l’apport d’un colostrum de bonne qualité, un programme de vaccination pré-vêlage (PVP) des veaux contre ces agents pathogènes pourrait permettre d’éviter ce risque. Ainsi, plusieurs études ont permis d’identifier une augmentation des titres en anticorps dans le sérum, dans le colostrum et dans le lait ainsi que dans le sérum des veaux avec la vaccination pré-vêlage de la mère contre l’ETEC, le rotavirus et le coronavirus notamment14,15,16,17,18,19,20. De même, d’autres études ont également permis de démontrer que le PVP est efficace pour réduire l’incidence, la gravité et la durée de la diarrhée et de l’excrétion d’agents pathogènes chez les veaux13,21,22,23. Toutefois, en ce qui concerne l’effet sur la mortalité des veaux, les premières études sur ce sujet ont montré des résultats variables24,25. Par conséquent, pour répondre aux interrogations, l’étude présentée ici s’intéresse à la mise en œuvre d’un programme de vaccination pré-vêlage (PVP) contre le rotavirus bovin, le coronavirus bovin et les entérotoxigènes (antigène F5) au niveau du troupeau de vaches laitières et à l’analyse de l’association entre les différents régimes alimentaires des veaux et leur survie.
Les chercheurs ont comparé les risques de mortalité chez les veaux durant la première année de vaccination (période V +) à la période d’un an qui a précédé la mise en place du programme de vaccination (période V-), en fonction des pratiques de PVP mises en place mais aussi des pratiques alimentaires. Pour cela, 15 exploitations laitières estoniennes qui suivaient un PVP ont été réparties en trois groupes (les utilisateurs complets du programme de vaccination pré-vêlage étendu (CEU), les utilisateurs complets du programme de vaccination pré-vêlage standard (CSU) et les utilisateurs incomplets du programme de vaccination pré-vêlage (USI)). Les données concernant l’année précédant la mise en œuvre du programme de vaccination (période V-) et la première année de vaccination (période V +) ont été collectées et analysées sur chaque troupeau selon le respect du mode d’emploi du vaccin et des pratiques d’alimentation.
Dans la plupart des exploitations (15 %), le colostrum a été donné aux veaux dans les deux premières heures après la naissance, et la quantité minimale de colostrum distribuée variait de 2 à 4 litres. La durée pendant laquelle les veaux ont reçu du lait de transition (TM) hyperimmun issu de vaches vaccinées variait de 1 à 90 jours. Six fermes n’ont nourri les veaux de TM qu’au cours des 14 premiers jours, tandis que les autres exploitations ont combiné différents types d’aliments au cours de cette période. Dans tous les troupeaux de l’étude, la vaccination avant le vêlage a été effectuée 3 à 12 semaines avant la date prévue du vêlage (RCP) soit avec Rotavec Corona (RC) 26 seul, soit avec Bovigen Scour (BS) 27 seul, ou avec les deux. De plus, quatre fermes n’ont pas vacciné leurs génisses gravides et parmi celles-ci, une seule n’a pas donné le lait de ses vaches aux veaux. En fonction de la procédure de vaccination et des pratiques d’alimentation mises en place par les éleveurs, six troupeaux répondaient aux exigences de l’UEC, quatre ont été classés comme CSU et trois comme USI parmi les 15 de l'étude.
- 2. Charlier J., Rinaldi L., Musella V., Ploeger H.W., Chartier C., Rose Vineer H., et al. Initial assessment of the economic burden of major parasitic helminth infections to the ruminant livestock industry in Europe. Prev Vet Med. 2020 ; 182 : 105103.
- 3. Gillandt K., Stracke J., Waßmuth R., Kemper N. A field study of the prevalence of and risk factors for endoparasites in beef suckler cow herds in Germany. Agriculture. 2018 ; 8 : 132.
- 4. Martinez-Ibeas A.M., Munita M.P., Lawlor K., Sekiya M., Mulcahy G., Sayers R. Rumen fluke in Irish sheep : prevalence, risk factors and molecular identification of two paramphistome species. BMC Vet Res. 2016 ; 12 : 143.
- 5. Van Dijk J., Sargison N.D., Kenyon F., Skuce P.J. Climate change and infectious disease : helminthological challenges to farmed ruminants in temperate regions. Animal. 2010 ; 4 : 377 – 92.
- 6. Kenyon F., Sargison N.D., Skuce P.J., Jackson F. Sheep helminth parasitic disease in south eastern Scotland arising as a possible consequence of climate change. Vet Parasitol. 2009 ; 163 : 293 – 7.
- 7. Khadijah S., Kahn L.P., Walkden-Brown S.W., Bailey J.N., Bowers S.F. Soil moisture influences the development of Haemonchus contortus and Trichostrongylus colubriformis to third stage larvae. Vet Parasitol. 2013 ; 196 : 161 – 71.
- 8. Niven P., Anderson N., Vizard A.L. Trichostrongylid infections in sheep after rainfall during summer in southern Australia. Aust Vet J. 2002 ; 80 : 567 – 70.
- 9. Van Dijk J. Climate change and the epidemiology of gastrointestinal nematodes of sheep. PhD, University of Bristol. 2008.
- 10. Wüstemann H., Bonn A., Albert C., Bertram C., Biber-Freudenberer L,. Dehnhardt A., et al. Synergies and trade-offs between nature conservation and climate policy : Insights from the Natural Capital Germany — TEEB DE study. Ecosyst Serv. 2017 ; 24 : 187 – 99.
- 11. Tanneberger F., Schröder C., Hohlbein M., Lenschow U., Permien T., Wichmann S., et al. Climate change mitigation through land use on rewetted peatlands — cross-sectoral spatial planning for paludiculture in Northeast Germany. Wetlands. 2020 ; 40 : 2309 – 20.
- 12. Kemper N., Henze C. Effects of pastures’re-wetting on endoparasites in cattle in northern Germany. Vet Parasitol. 2009 ; 161 : 302 – 6.
- 13. German Meteorological Service. 2017. https ://www. dwd.de/DE/leistungen/_functions/Suche/Suche_Formular.html?nn=16102. Accessed 13 January 2019.
- 14. Machatschek M., Reifeltshammer S., Uedl M. Der Leberegel und die Wasserhaushaltsführung in Riedwiesen (Liver fluke and water management on free pastures). Der Alm Bergbauer. 1999 ; 4:29 – 33.
- 15. Jones R.A., Brophy P.M., Mitchell E.S., Williams H.W. Rumen fluke (Calicophoron daubneyi) on Welsh farms : prevalence, risk factors and observations on co-infection with Fasciola hepatica. Parasitology. 2017 ; 144 : 237 – 47.
- 16. Fuertes M, Pérez V, Benavides J, González-Lanza MC, Mezo M, González-Warleta M, et al. Pathological changes in cattle naturally infected by Calicophoron daubneyi adult flukes. Vet Parasitol. 2015 ; 209 : 188 – 96.
- 17. Huson K.M., Oliver N.A.M., Robinson M.W. Paramphistomosis of ruminants : an emerging parasitic disease in Europe. Trends Parasitol. 2017 ; 33 : 11.
- 18. Taylor M.A. Emerging parasitic diseases of sheep. Vet Parasitol. 2012 ; 189 : 65 – 71.
- 19. Zintl A., Garcia-Campos A., Trudgett A., Chryssafidis A.L., Talavera-Arce S., Fu Y., et al. Bovine paramphistomes in Ireland. Vet Par. 2014 ; 204 : 199 – 208.
- 20. Naranjo-Lucena A., Corbalán M.P.M., Martínez-Ibeas A.M., McGarth G., Murray G., Casey M,. et al. Spatial patterns of Fasciola hepatica and Calicophoron daubneyi infections in ruminants in Ireland and modelling C. daubneyi infection. Parasit Vect. 2018 ; 11 : 531.
- 21. Abrous M., Rondelaud D., Dreyfuss G. Paramphistomum daubneyi and Fasciola hepatica : Influence of temperature changes on the shedding of cercariae from dually infected Lymnea truncatula. Parasitol Res. 1999 ; 85 : 765 – 769.
- 22. Ploeger H.W., Ankum L., Moll L., van Doorn D.C.K., Mitchell G., Skuce P.J., et al. Presence and species identity of rumen flukes in cattle and sheep in the Netherlands. Vet Parasitol. 2017 ; 243 : 42 – 6.
- 23. Toolan D.P., Mitchell G., Searle K., Seehan M., Skuce P.J., Zadks R.N. Bovine and ovine rumen fluke in Ireland — prevalence, risk factors and species identity based on passive veterinary surveillance and abattoir findings. Vet Parasitol. 2015 ; 212 : 168 – 74.
- 24. Horak I.G. Paramphistomiasis of domestic ruminants. Adv Parasitol. 1971 ; 9:33 – 72.
- 25. May K., Brügemann K., König S., Strube C. The effect of patent Dictyocaulus viviparus (re) infections on individual milk yield and milk quality in pastured dairy cows and correlation with clinical signs. Parasit Vect. 2018 ; 11:24.